研究干冰洗衣机对细菌2的清洗过程-行业动态
* 来源: * 作者: * 发表时间: 2020/05/31 0:30:22 * 浏览: 8
采样策略：目标161623。项目的这一部分涉及对基质进行表面采样，以回收可能存在的任何可行的细菌和真菌分离株。 61623，为了培养细菌和真菌分离株，取样了胰蛋白酶大豆琼脂（TSA）和蔗糖琼脂（SDA）。 61623，将TSA板在37°C下孵育24小时。 61623和SDA板在30°C下孵育4-7天。 18.孵育后，通过标准计数活微生物来计算每种底物的相对污染率。图1：从底物回收活细胞程序的示意图。采样策略：目标261623，分别在LB肉汤和TSA肉汤中制备大肠杆菌，单核细胞增生性李斯特菌和肠炎沙门氏菌的培养物。将这些培养物在37°C下孵育过夜。然后将培养物在所评估的四种底物上分别调节至所需的起始浓度。 61623，使用高数量（105 CFU / mL）的污染细胞，通过擦拭法接种底物。在实验过程中，发现可以成功转移到每个底物上的污染细胞数约为1-3×105CFU / mL。 61623，擦拭方法的污染水平约为105 CFU / mL：将棉签浸泡在标准化为〜1×107 CFU / ml的过夜培养物中。 61623，然后使用浸湿的棉签分别转移每种底物的培养物。将底物干燥5分钟，并连续重复培养两次。在干燥的最后5分钟之后，将基材暴露于干冰中并洗涤10秒。用测试基质实验进行非干冰洗涤的对照瓶，并且在任何给定的测试日将上述每个实验重复两次。 61623.暴露后，将新鲜的棉签浸入1 mL盐溶液（Ringer39，s）中，然后用于从对照和经干冰清洁的底物中回收活细胞。如上所述，擦拭的表面积用于蜂窝应用。用相同的棉签在表面积上连续擦拭每个底物3次，以确保细胞的有效恢复。然后，将含有回收细胞的1 mL盐溶液依次稀释，并分别包被在LB / TSA琼脂上进行选择和计数。将板在37℃下孵育过夜，并且将存活的细胞表示为平均值±标准偏差。 61623.通过测试细胞与对照细胞活力计数之间的比较分析，确定了每种菌株/底物净化策略的功效。图2：在干冰清洁挑战实验期间采样应用和从基材回收的示意图。 61623，控件代表已接种大肠杆菌但未用干冰清洁的瓷砖部分。 61623，测试表明瓷砖接种了大肠杆菌，但采用干冰清洁工艺进行了清洁。 61623，瓷砖部分在基材测试部分的干冰清洁期间测试了大肠杆菌在基材表面上的交叉转移。研究第1部分中的数据摘要：研究各种不同底物上存在的微生物负荷。在61485中，总共筛选了7种不同的底物，以确定细菌和真菌的存在。 61485，发现所有底物均含有极少量的污染微生物。 61485中，100％的底物含有培养细菌污染，发现42％的底物被真菌污染。 61485，总的微生物计数范围是0-54个菌落形成单位（cfu）/底物。 61485，胰蛋白酶大豆琼脂（TSA）和鲑鱼葡萄糖琼脂（SDA）是分离一般微生物负荷的介质。研究第2部分的摘要数据：使用选定的革兰氏阳性和革兰氏阴性食品相关病原微生物来研究干冰过程对人工污染的基质的功效。摘要从获得的结果来看，很明显，干冰清洗过程是一种有效的方法，当暴露于规定的10秒暴露时间后，该方法可以使一系列不同的基质中的革兰氏阳性细菌和革兰氏阴性细菌失活。大肠杆菌，肠炎沙门氏菌和单核细胞增生性李斯特菌的灭活率分别为98.73-100％，99.99-100％和99.62-100％。此外，初步结果表明，在干冰洗涤过程中，几乎没有微生物转移到清洁部分基材。在肠炎沙门氏菌测试期间，转移明显为0.01％，对大肠杆菌和单核细胞增生性李斯特菌的攻击为0.00％。实验。另外，已经确定在这些基材上发现的自然污染水平通常较低。在研究的第二部分中，用于人工污染基质的细菌的不同浓度远远超过了环境中通常发现的水平，因此凸显了这种新的干冰清洁工艺作为新型去污设备的巨大潜力。选择革兰氏阳性和革兰氏阴性细菌-最值得注意的是那些与食品工业密切相关的细菌。致谢技术研究中心
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